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單克隆抗體的純化方法同多克隆抗體的純化,腹水特異性抗體的濃度較抗血清中的多克隆抗體高,純化效果好。按所要求的純度不同采用相應(yīng)的純化方法。一般采用鹽析、凝膠過濾和離子交換層析等步驟達到純化目的,也有采用較簡單的酸沉淀方法。目前zui有效的單克隆抗體純化方法為親和純化法,多用葡萄球菌A蛋白或抗小鼠球蛋白抗體與載體(zui常用Sepharose)交聯(lián),制備親和層析柱將抗體結(jié)合后洗脫,回收率可達90%以上。蛋白可與IgG1、IgG2a、IgG2b和IgG3結(jié)合,同時還結(jié)合少量的IgM。洗脫液中的抗體濃度可用紫外光吸收法粗測,小鼠IgG單克隆抗體溶液在A280nm時,1.44(吸光單位)相當(dāng)于1mg/ml。經(jīng)低pH洗脫后在收集管內(nèi)預(yù)置中和液或速加中和液對保持純化抗體的活性至關(guān)重要。
有限稀釋法 5-羥色胺受體1B抗體說明,Anti-5-HTR1B
篩選陽性株一般選用的骨髓瘤細胞為HAT敏感細胞株,所以只有融合的細胞才能待續(xù)存活一周以上。融合細胞呈克隆生長,經(jīng)有限稀釋后(一般稀釋至0.8個細胞/孔),按Poisson法計算,應(yīng)有36%的孔為1個細胞/孔。細胞培養(yǎng)至覆蓋0%~20%孔底時,吸取培養(yǎng)上清用ELISA檢測抗體含量。首先依抗體的分泌情況篩選出高抗體分泌孔,將孔中細胞再行克隆化,爾后進行抗原特異的ELISA測定,選高分泌特異性細胞株擴大培養(yǎng)或凍存。
單克隆抗體的制備和凍存
篩選出的陽性細胞株應(yīng)及早進行抗體制備,因為融合細胞隨培養(yǎng)時間延長,發(fā)生污染、染包體丟失和細胞死亡的機率增加。抗體制備有兩種方法。一是增量培養(yǎng)法,即將雜交瘤細胞在體外培養(yǎng),在培養(yǎng)液中分離單克隆抗體。該法需用特殊的儀器設(shè)備,一般應(yīng)用無血清培養(yǎng)基,以利于單克隆抗體的濃縮和純化。zui普遍采用的是小鼠腹腔接種法。選用BALB/c小鼠或其親代小鼠,先用降植烷或液體石蠟行小鼠腹腔注射,一周后將雜交瘤細胞接種到小鼠腹腔中去。通常在接種一周后即有明顯的腹水產(chǎn)生,每只小鼠可收集5~10ml的腹水,有時甚至超過40ml。該法制備的腹水抗體含量高,每毫升可達數(shù)毫克甚至數(shù)十毫克水平。此外,腹水中的雜蛋白也較少,便于抗體的純化。接種細胞的數(shù)量應(yīng)適當(dāng),一般為5×105/鼠,可根據(jù)腹水生長情況適當(dāng)增減。
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