檢查試管是否干燥、潔凈，若否，則將其洗凈并置于干燥箱內120℃烘干。
1.標準曲線的制作
取普通清潔試管7支，標號，1號管為空白，2～7管用微量注射器分別加1.0mg/mL的牛血清白蛋白（即標準蛋白質）溶液10，20，40，60，80，100mL。各管均用0.015mol/L PBS緩沖液補充到100mL（即0.1mL），詳見表6-1。混勻待用。
表13-1標準曲線的制作
管號 | 標準蛋白質（mL） | 緩沖液（mL） | 總體積（mL） |
1 | 0 | 100 | 100 |
2 | 10 | 90 | 100 |
3 | 20 | 80 | 100 |
4 | 40 | 60 | 100 |
5 | 60 | 40 | 100 |
6 | 80 | 20 | 100 |
7 | 100 | 0 | 100 |
2.將待測蛋白配成合適濃度
另取3支清潔試管，編號8、9、10，用微量注射器按表6-2操作，將待測蛋白配成系列濃度。
表13-2待測蛋白的稀釋
管號 | 待測蛋白質（mL） | 緩沖液（mL） | 總體積（mL） | 稀釋倍數 |
8 | 20 | 80 | 100 | 5 |
9 | 40 | 60 | 100 | 2.5 |
10 | 60 | 40 | 100 | 1.67 |
3.加入G250試劑
各試管充分混勻后，用取樣器分別加入5.0mL考馬斯亮蘭G250試劑，每加完一管，立即混合（注意不要太劇烈，以免產生大量氣泡而難于消除）。
4.比色
各管室溫靜置2～5min后，在分光光度計上測定595nm處的光吸收值A 595 ，空白對照為第1號試管，標準和待測蛋白樣同時比色。
注意：不可使用石英比色皿（因不易洗去染色），只能使用玻璃比色皿，使用后立即用少量95%的乙醇潤洗，洗去顏色。
5.制作標準曲線
以標準蛋白質濃度（mg/mL）為橫座標、吸光度值A 595 為縱座標作圖，即得到一條標準曲線。
6.根據標準曲線計算待測蛋白濃度
在標準曲線上，根據測出的待測樣品的A 595 值，查出試管中蛋白質濃度，再按照計算公式：
待測蛋白質的濃度（mg/mL）＝查出的濃度×稀釋倍數 |
計算出待測蛋白濃度。如樣品稀釋合理且操作得當，待測蛋白的三個數值應具有同一性，取其平均值作為待測蛋白濃度。如某一光吸收值落在標準曲線線性范圍外，舍棄該點。
計算
管號 | 標準蛋白質（mL ） | 緩沖液（mL ） | G-250試劑（mL） | 每管中的蛋白質濃度（mg/mL） | 光吸收值（A 595 ） | |
標 準 蛋 白 | 1 | 0 | 100 | 5 | 0 |
|
2 | 10 | 90 | 5 | 0.1 |
| |
3 | 20 | 80 | 5 | 0.2 |
| |
4 | 40 | 60 | 5 | 0.4 |
| |
5 | 60 | 40 | 5 | 0.6 |
| |
6 | 80 | 20 | 5 | 0.8 |
| |
7 | 100 | 0 | 5 | 1.0 |
| |
管號 | 待測蛋白質（mL ） | 緩沖液（mL ） | G250試劑（mL） | A 595 | 查出的濃度（mg/mL） | 稀釋倍數 | 待測蛋白質濃度（mg/mL） | ||
待測蛋白 | 8 | 20 | 80 | 5 |
|
| 5 |
| |
9 | 40 | 60 | 5 |
|
| 2.5 |
| ||
10 | 60 | 40 | 5 |
|
| 1.67 |
| ||
結果：待測蛋白質的濃度為： mg/mL
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