注1:整個綴合過程可以在 一天內(nèi)完成。但是，綴合前對APC 的純化可能需要24-48小時。除了下面列出的材料外，您還需要濃度至少為 2 mg/ml 的抗體溶液。請您在進行APC抗體綴合實驗之前熟悉如何使用脫鹽柱以及如何獲取吸光度光譜。
注 2 : SMCC-APC 綴合物非常穩(wěn)定(在“交換緩沖液”中，在4C下至少可以穩(wěn)定幾個月)。因此， 如果您需要節(jié)省一部分時間，可以選擇同時綴合10 毫克或更多的 APC,并將其用于幾次抗體實驗(在幾周內(nèi))。SMCC-APC 的長期儲存最好是作為飽和硫酸銨沉淀物。
一 APC的制備
1.將 APC 純化。綴合前的濃度通常為 5-10 mg/ml 。 注意：APC 在綴合前作為SAS (硫酸銨鈉)
沉淀物穩(wěn)定。如果將APC以SAS 沉淀物的形式儲存，則必須在使用前進行大量純化。在用每毫升1 升的“透析緩沖液”透析之前，用每毫升1 升APC 的PBS進行透析2 次。
2.使用1 .7毫克APC 修飾每毫克lgG,包括在緩沖液交換過程中損失的額外10%。
3.檢查 APC 的純度和濃度，請測量280、620和655 nm 處的吸光度。 (1 mg/ml的APC 在 655nm處的OD 為 5 . 9 ) 。 655/620 比 率 > 1 . 4表明雜質(zhì)被充分去除；655/280 比 率 > 4 表明所有其他蛋白質(zhì)均已充分去除
二 .A PC的活化
1.使用前在無水 DMSO 中制備10 mg/ml的SMCC儲備溶液。
2.每毫克 APC 加 入 6μlSMCC,并進行渦旋。將反應(yīng)管用鋁箔包好，室溫下旋轉(zhuǎn)60 分鐘。
3.將純化的 APC 過凝膠過濾柱來交換緩沖液。
注意：對于失敗或效果較差的結(jié)合，增加或減少SMCC相對于APC 的量，可能會有所好轉(zhuǎn)。
三 . 1gG還原
1.在蒸餾水中制備1MDTT(15.4 mg/100 μl) 的新鮮溶液。
2.1gG 溶液濃度應(yīng)為4 mg/ml 或更高，這樣效果比較好。還原幾乎可以在任何緩沖液中進行； MES 、磷酸鹽和TRIS 緩沖液 (pH 范圍為 6 至8)已被驗證可以使用。如果抗體濃度低于2 mg/ml,則應(yīng)濃縮。緩沖液交換柱上的損失應(yīng)額外增加10%。
3.用 DTT 配制20 mMlgG 溶液：每毫升 IgG 溶液加入 20μ lDTT 原液并攪拌。室溫下靜置30分鐘，無需額外攪拌 (以盡量減少半胱an酸再氧化為胱an酸)。
4.將還原的lgG 通過預(yù)平衡的“交換緩沖液”過濾柱。收集0.25毫升的級分，測定蛋白濃度，并將含有大部分lgG 的級分匯集在一起。可以通過分光光度法或比色法完成。
5.此步驟后盡快進行綴合。
注意：對于結(jié)合較差或失敗的情況，降低 DTT濃度可能會有所幫助。
四 .進行綴合
1.每毫克IgG添加 1 . 5毫克 SMCC-APC 。 用鋁箔包裹反應(yīng)管并在室溫下旋轉(zhuǎn)60 分鐘。注意：這些摩爾比 ( 每 1gG 約 2 個 APC)效果很好。對于失敗或效果不佳的結(jié)合，不同的摩爾比可能會有所幫助。
2.60分鐘后，必須去掉 lgG 上未反應(yīng)的游離巰基。
3.在 1.0 ml干DMSO 中制備10 mg NEM的新鮮溶液。
4.每 毫 克 |gG 添加 34μ g(3.4μl) 。 室溫下包裹并旋轉(zhuǎn)20 分鐘。
2.60分鐘后，必須去掉 lgG 上未反應(yīng)的游離巰基。
3.在 1.0 ml干 DMSO 中制備 10 mg NEM的新鮮溶液。
4.每毫克 |gG添加 34μ g(3.4μl) 。 室溫下包裹并旋轉(zhuǎn)20 分鐘。
