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活體成像檢測底物:D-Luciferin D-蟲熒光素

時間:2017/9/7閱讀:8178
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活體成像研究底物之:

Firefly D-Luciferin D-蟲熒光素(Luc基因)

——活體成像研究/體外生物發光研究/轉錄水平研究

 

搜索關鍵詞:

Luc reporter gene 報告基因;Luciferase 螢火蟲熒光素酶;In vivo imaging 活體成像研究;熒光素酶/ATP水平研究;報告基因質粒;報告基因bing毒顆粒;螢火蟲熒光素甲蟲熒光素;CAS103404-75-7

 

基本描述:

D-熒光素(D-Luciferin)是熒光素酶(Luciferase)的常用底物,普遍用于整個生物技術領域,特別是體內活體成像技術。作用機制是在ATP和熒光素酶的作用下,D-熒光素(底物)被氧化發光。當熒光素過量時,產生的光量子數與熒光素酶的濃度呈正相關性(見下圖)。將攜帶熒光素酶編碼基因(Luc)的質粒轉染進入細胞后,導入研究動物如大小鼠體內,之后注入熒光素,通過生物發光成像技術(BLI)來檢測光強度變化,從而實時監測疾病發展狀態或藥物的治療功效等。也可以利用ATP對此反應體系的影響,根據生物發光強度的變化 來指示能量或生命體征。

 

基本應用:

1. 體內活體成像In vivo imaging

2. 體外研究,包括熒光素酶和ATP水平分析;報告基因分析;高通量測序和各種污染檢測。

 

常見商業化類型的差異(熒光素鉀,鈉,游離酸):

目前市場上常見的有三種產品形式,D-熒光素(游離酸)D-熒光素(鈉鹽),和D-熒光素(鉀鹽)。這三種產品主要差別在于溶解特性。

1D-熒光素(游離酸)在水以及緩沖體系內的溶解性都很弱,除非溶于弱堿如NaOHKOH溶液。溶于甲醇(10 mg/ml)和DMSO50 mg/ml)。

2D-熒光素(鈉鹽)和D-熒光素(鉀鹽)能夠非常容易且快速的溶入水或者緩沖液中,使用方便,溶劑無毒性,特別適合體內實驗。配成溶液后的三種產品,在絕大多數應用上都沒有實質性的差別。

3D-熒光素(鈉鹽)和D-熒光素(鉀鹽)基本上沒有差別,主要是使用習慣等因素影響。整體來看,鉀鹽的應用文獻明顯多于鈉鹽。

 

使用方法【體內成像/腹腔注射】

由于D-熒光素進入體內的生物分布非常快速且動力學具組織依賴性,因此,研究人員需正式實驗前確定自身動物在D-熒光素注射后的成像采集zuijia時間。通過建立動物模型的熒光素酶動力學曲線來完成。

.動力學曲線建立(Kinetic curve

1.1 如下腹腔注射(i.p.D-熒光素。傾向于注射清醒小鼠,如果需要在注射前麻醉小鼠,也是可以的,但可能會稍微延長動力學(熒光素酶表達峰值時間點)。

1.2 等待三分鐘,然后按照自身選擇的方法如氣體麻醉或注射麻醉。

1.3 將麻醉動物置于成像腔內,D-luciferin注射約5min后拍*張照片。

1.4 每隔5-10min采集圖像zui高40min,建立模型相關的熒光素酶表達動力曲線。使用2%異氟烷的麻醉健康動物能在活體成像系統如IVIS內安全放置45min

1.5 一旦建立曲線后能確定zuijia的信號采集點。大部分的模型都是在D-熒光素注射10-20min后采集圖像。

二.D-熒光素溶液準備

2.1 用無菌的PBSw/o Mg2+)或者DPBSw/o Mg2+)配制D-熒光素(鈉鹽/鉀鹽)儲存液(15mg/ml,根據動物體重和單次注射體積來決定),0.2µm濾膜過濾除菌。混勻后立即使用或分裝于-20-80凍存,避免反復凍融。一旦使用,放到4解凍,保持冰冷且避光。

2.2 注射150mg/kg體重。(比如,體重10g小鼠注射100μl 15mg/ml的儲存液從而給1.5mg D-熒光素);

2.3 于成像前5-15min腹腔注射D-熒光素。

【注意】:對每只動物模型需要建立D-熒光素動力學曲線研究,以確定熒光素注射后達到信號峰值的時間點。

三.腹腔注射(i.p.

zuijia射點(Preferred site

動物左下腹部(lower left abdominal quadrant

針頭大小(Needle size

25 gauge,通常與1ml1 cc)注射器配套使用

體積(Volumn

10g體重小鼠加入100μl 15mg/ml D-熒光素。【腹腔單次注射1ml 無刺激性溶液對動物無任何壓力】。

動物位置(Position of animal):

手動固定,背臥位(腹部向上),動物顱(頭部)朝下

注射(Injection):

Needle should be bevel-side up and slightly angled when entering the abdominal cavity. Penetrate just through abdominal wall (about 4-5mm). The tip of the needle should just penetrate the abdominal wall of the animal’s left lower abdominal quadrant.

 

應用示例【生物化學發光體內成像】

Fig. 1 Image illustrates the IVIS spectrum imager and a mouse placed inside the camera box.

Fig. 2 Bioluminescence in vivo imaging. A. Representative luciferase time course (every 2 min) imaging of mice bearing subcutaneous tumors injected with luciferin. B. Graph illustrates the bioluminescence saturation of the whole mouse (displayed in A.) obtained

 

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 — —Written/Edited by V. Shallan【版權歸MKBio懋康所有】
 

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