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當前位置:上海永葉生物科技有限公司>>技術文章>>肉毒梭菌及肉毒毒素檢驗(征求意見稿)
1 范圍
本標準規(guī)定了食品中肉毒梭菌(Clostridium botulinum)及肉毒毒素(botulinum Toxin)的檢驗方法。
本標準適用于食品中肉毒梭菌及肉毒毒素的檢驗。
2 設備和材料
除微生物實驗室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設備外,其他設備和材料如下:
a)冰箱:2℃~5℃、-20℃;
b)天平:感量0.1g;
c)無菌*、鑷子、試劑勺;
d)均質(zhì)器或無菌乳缽;
e)離心機:3000 rpm、14000 rpm
f)厭氧培養(yǎng)裝置;
g)恒溫培養(yǎng)箱:35℃±1℃、28℃±1℃;
h)恒溫水浴箱:37℃±1℃、60℃±1℃、80℃±1℃;
i)顯微鏡:10倍×100倍
j)PCR儀;
k)電泳儀或毛細管電泳儀;
l)凝膠成像系統(tǒng)或紫外檢測儀;
m)核酸蛋白分析儀或紫外分光光度計;
n)可調(diào)微量移液器:0.2µL~2µL、2µL~20µL、20µL~200µL、100µL~1000µL;
o)無菌吸管:1.0mL、10.0 mL、25 .0mL;
p)無菌錐形瓶:100 mL;
q)培養(yǎng)皿:直徑90mm;
r)離心管:50mL、1.5mL;
s)PCR反應管;
t)*:1.0mL;
u)小鼠:15g~20g,每一批次試驗應使用同一品系的KM或ICR小鼠。
3 培養(yǎng)基和試劑
除另有規(guī)定外,PCR試驗所用試劑為分析純或符合生化試劑標準,水應符合GB/T6682中一級水的規(guī)格。
3.1 庖肉培養(yǎng)基:見附錄A中A.1。
3.2 *胰蛋白胨葡萄糖酵母膏肉湯(TPGYT):見附錄A中A.2。
3.3 卵黃瓊脂培養(yǎng)基:見附錄A中A.3。
3.4 明膠磷酸鹽緩沖液:見附錄A中A.4。
3.5 革蘭氏染色液:見附錄A中A.5。
3.6 10%*溶液:見附錄A中A.6。
3.7 磷酸鹽緩沖液(PBS):見附錄A中A.7。
3.8 1mol/L氫氧化鈉。
3.9 1mol/L鹽酸。
3.10 肉毒毒素診斷血清。
3.11 無水乙醇和95%乙醇。
3.12 10mg/mL*溶液。
3.13 10mg/mL蛋白酶K溶液。
3.14 3mol/L 乙酸鈉溶液(pH5.2)。
3.15 TE緩沖液。
3.16 引物:根據(jù)表1中序列合成,臨用時用超純水配制引物濃度為10 µmol/L。
3.17 10×PCR緩沖液。
3.18 25mmol/LMgCl2。
3.19 dNTPs:dATP、dTTP、dCTP、dGCP。
3.20 Taq酶。
3.21 瓊脂糖:電泳級。
3.22 溴化乙錠或Goldview。
3.23 5×TBE緩沖液。
3.24 6×加樣緩沖液。
3.25 DNA分子量標準。
4 檢驗程序
肉毒梭菌及肉毒毒素檢驗程序見圖1。
5 操作步驟
5.1 樣品制備
5.1.1 樣品保存
待檢樣品(除未打開的正常罐頭食品)和明顯膨脹的罐頭食品應放2℃~5℃冰箱冷藏,直至檢驗。
5.1.2 固態(tài)食品
固體或游離液體很少的半固態(tài)食品,以無菌操作稱取樣品25g,放入無菌均質(zhì)袋或無菌乳缽,塊狀食品用無菌刀剪切碎,含水量較高的固態(tài)食品加入25mL明膠磷酸鹽緩沖液,乳粉、牛肉干等含水量低的食品加入50mL明膠磷酸鹽緩沖液,浸泡30分鐘,用拍擊式均質(zhì)器拍打2min或用無菌研杵研磨制備樣品勻液,收集備用。
5.1.3 液態(tài)食品
液態(tài)食品搖勻,直接量取25mL檢驗。
5.1.4 樣品處理
取樣后的剩余樣品放2℃~5℃冰箱冷藏,直至檢驗結果報告發(fā)出后,按感染性廢棄物要求進行無害化處理,檢出陽性的樣品應采用壓力蒸汽滅菌方式進行無害化處理。
5.2 肉毒毒素檢測
5.2.1 毒素液制備
取樣品勻液約40mL或均勻液體樣品25mL放入離心管,3000r/min,10min~20min離心,收集上清液分為兩份放入無菌試管中,一份直接用于毒素檢測,一份用于*處理后進行毒素檢測,液體樣品保留底部沉淀液約12mL備用。
*處理:用1mol/L氫氧化鈉或1mol/L鹽酸調(diào)節(jié)上清液pH至6.2,按9份上清液加1份10%*(活力1:250)水溶液,混勻,37℃孵育60min,期間間或輕輕搖動反應液。
5.2.2 檢出試驗
用5號針頭注射器取離心上清液和*處理上清液分別腹腔注射小鼠三只,每只0.5mL,觀察和記錄小鼠48h中毒表現(xiàn)。小鼠在24h內(nèi)出現(xiàn)肉毒毒素中毒典型癥狀,多數(shù)在6h內(nèi)發(fā)病和死亡,其主要表現(xiàn)為豎毛、呼吸困難、四肢癱軟,呈現(xiàn)風箱式呼吸、腰腹部凹陷、宛如蜂腰,因呼吸衰竭而死亡,可初步判定為毒素檢出。若小鼠在24h后發(fā)病或死亡,應仔細觀察小鼠癥狀,必要時濃縮上清液重復試驗,以排除肉毒毒素中毒。若小鼠出現(xiàn)猝死(30min內(nèi))導致癥狀不明顯時,可將毒素上清液進行適當稀釋,重復試驗。
注:毒素檢測動物試驗應遵循《食品毒理學實驗室操作規(guī)范》(GB15193.2)的規(guī)定。
5.2.3 確證試驗
上清液或(和)*處理上清液的毒素檢出試驗陽性者,取相應試驗液三份,每份0.5mL,其中*份加等量多型混合肉毒毒素診斷血清,混勻,37℃孵育30min;第二份加等量明膠磷酸鹽緩沖液,混勻,煮沸10min;第三份加等量明膠磷酸鹽緩沖液,混勻。將三份混合液分別腹腔注射小鼠各兩只,每只0.5mL,觀察96h。
結果判定:若注射*份和第二份混合液的小鼠未死亡,而第三份混合液小鼠發(fā)病死亡,并出現(xiàn)肉毒毒素中毒的*癥狀,則判定檢測樣品中檢出肉毒毒素。
5.2.4 毒力測定(選做項目)
取確證試驗陽性的試驗液,用明膠磷酸鹽緩沖液稀釋制備一定倍數(shù)稀釋液,如10倍、50倍、100倍、500倍等,分別腹腔注射小鼠各兩只,每只0.5mL,觀察和記錄小鼠發(fā)病與死亡情況至96h,計算zui低致死劑量MLD/mL或MLD/g,評估樣品中肉毒毒素毒力,MLD等于小鼠全部死亡的zui高稀釋倍數(shù)乘以樣品試驗液稀釋倍數(shù)。例如,樣品稀釋兩倍制備的上清液,再稀釋100倍試驗液使小鼠全部死亡,而500倍稀釋液組存活,則該樣品毒力為200MLD/g。
5.2.5 定型試驗(選做項目)
根據(jù)毒力測定結果,用明膠磷酸鹽緩沖液將上清液稀釋至10~1000MLD/mL作為定型試驗液,分別與各單型肉毒毒素診斷血清等量混合(國產(chǎn)診斷血清一般為凍干血清,用1mL生理鹽水溶解,能中和10000LD50的相應毒素),37℃孵育30min,分別腹腔注射小鼠兩只,每只0.5mL,觀察和記錄小鼠發(fā)病與死亡情況至96h。同時,用明膠磷酸鹽緩沖液代替診斷血清,與試驗液等量混合作為小鼠試驗對照。
結果判定:某一單型診斷血清組動物未發(fā)病且正常存活,而對照組和其他單型診斷血清組動物發(fā)病死亡,則判定樣品中所含肉毒毒素為該型肉毒毒素。
注:未經(jīng)*激活處理的樣品上清液的毒素檢出試驗或確證試驗為陽性者,則毒力測定和定型試驗可省略*激活處理試驗。
5.3 肉毒梭菌檢驗
5.3.1 增菌培養(yǎng)與檢出試驗
5.3.1.1 取出庖肉培養(yǎng)基4支和TPGY肉湯管2支,隔水煮沸10min-15min,排除溶解氧,迅速冷卻,切勿搖動,在TPGY肉湯管中緩慢加入*液至液體石蠟液面下肉湯中,每支1mL,制備成TPGYT。
5.3.1.2 吸取樣品勻液或毒素制備過程中的離心沉淀液2mL接種至庖肉培養(yǎng)基中,每份樣品接種4支,2支直接放置35℃±1℃厭氧培養(yǎng)至5d,另2支放80℃保溫10min,再放置35℃±1℃厭氧培養(yǎng)至5d;同樣方法接種2支 TPGYT肉湯管, 28℃±1℃厭氧培養(yǎng)至5d。接種時將樣品液吸管慢慢穿過肉湯液面接種到肉湯管底部,切勿攪動。
5.3.1.3 檢查記錄增菌培養(yǎng)物的濁度、產(chǎn)氣、肉渣顆粒消化情況,并注意氣味。肉毒梭菌培養(yǎng)物為產(chǎn)氣、肉湯渾濁(庖肉培養(yǎng)基中A型和B型肉毒梭菌肉湯變黑)、消化或不消化肉粒、有異臭味。
5.3.1.4 將增菌培養(yǎng)物進行革蘭氏染色鏡檢,觀察菌體形態(tài),注意是否有芽胞、芽胞的相對比例、芽胞在細胞內(nèi)的位置。
5.3.1.5 若增菌培養(yǎng)物5d無菌生長,應延長培養(yǎng)至10d,觀察生長情況。
5.3.1.6 取增菌培養(yǎng)物陽性管的上清液,按5.2方法進行毒素檢出和確證試驗,必要時進行定型試驗,陽性結果可證明樣品中有肉毒梭菌存在。
注:TPGYT增菌液的毒素試驗無需添加*處理。
5.3.2 分離與純化培養(yǎng)
5.3.2.1 增菌液前處理,吸取1mL增菌液至無菌螺旋帽試管中,加入等體積過濾除菌的無水乙醇,混勻,在室溫下放置1h。
5.3.2.2 取增菌培養(yǎng)物和經(jīng)乙醇處理的增菌液分別劃線接種至卵黃瓊脂平板,35℃±1℃厭氧培養(yǎng)48h。
5.3.2.3 觀察平板培養(yǎng)物菌落形態(tài),肉毒梭菌菌落隆起或扁平、光滑或粗糙,易成蔓延生長,邊緣不規(guī)則,在菌落周圍形成乳色沉淀暈圈(E型較寬,AB型較窄),用斜視光觀察,菌落表面呈現(xiàn)珍珠樣彩虹,這種光澤區(qū)可隨蔓延生長擴散到不規(guī)則邊緣區(qū)外的暈圈。
5.3.2.4 菌株純化培養(yǎng),在分離培養(yǎng)平板上選擇5個肉毒梭菌可疑菌落,分別接種卵黃瓊脂平板,35℃±1℃,厭氧培養(yǎng)48h,按5.3.2.3觀察菌落形態(tài)及其純度。
5.3.3 鑒定試驗
5.3.3.1 染色鏡檢
挑取可疑菌落進行涂片、革蘭氏染色和鏡檢,肉毒梭菌菌體形態(tài)為革蘭氏陽性粗大桿菌、芽胞卵圓形、大于菌體、位于次端,菌體呈網(wǎng)球拍狀。
5.3.3.2 毒素基因檢測(PCR快速鑒定)
a)菌株活化:挑取可疑菌落或待鑒定菌株接種TPGY,35℃±1℃厭氧培養(yǎng)24h。
b)DNA模板制備:吸取TPGY培養(yǎng)液1.4mL至無菌離心管中, 14000g離心2min,棄上清,加入1.0mLPBS懸浮菌體,14000g離心2min,棄上清,用400µL PBS重懸沉淀,加入10mg/mL*溶液100µL,搖勻,37℃水浴15min,加入10mg/mL蛋白酶K溶液10µL,搖勻,60℃水浴1h,再沸水浴10min,14000g離心2min,上清液轉(zhuǎn)移至無菌小離心管中,加入3mol/LNaAc溶液50µL和95%乙醇1.0mL,搖勻,-70℃或-20℃放置30min,14000g離心10min,棄去上清液,沉淀干燥后溶于200µLTE緩沖液,置于-20°C保存?zhèn)溆谩?/p>
注:根據(jù)實驗室實際情況,也可采用常規(guī)水煮沸法或商品化試劑盒制備DNA模板。
c)核酸濃度測定(必要時):取5µLDNA模板溶液,加超純水稀釋至1mL,用核酸蛋白分析儀或紫外分光光度計分別檢測260nm和280nm波段的吸光值A260和A280。按式(1)計算DNA濃度。當濃度在0.34µg/mL~340µg/mL或A260/A280比值在1.7~1.9之間時,適宜于PCR擴增。
C= A260×N×50 ………………………(1)
式中:
C—DNA濃度,單位為µg/mL;
A260—260nm處的吸光值;
N—核酸稀釋倍數(shù)。
d)PCR擴增
1)采用分別針對A型、B型、E型和F型肉毒梭菌毒素基因設計的特異性引物(見表1)進行PCR擴增,每個PCR反應管檢測一種型別的肉毒梭菌。
2)反應體系配制見表2,反應體系中各試劑的量可根據(jù)具體情況或不同的反應總體積進行相應調(diào)整。
3)反應程序,預變性95℃、5min;循環(huán)參數(shù)94℃、1min,60℃、1min,72℃、1min;循環(huán)數(shù)40;后延伸72℃,10min;4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
4)PCR擴增體系應設置陽性對照、陰性對照和空白對照。用含有已知肉毒梭菌菌株或含肉毒毒素基因的質(zhì)控品作陽性對照、非肉毒梭菌基因組DNA作陰性對照、無菌水作空白對照。
e)凝膠電泳檢測PCR擴增產(chǎn)物,用0.5×TBE緩沖液配制1.2~1.5的瓊脂糖凝膠,凝膠加熱融化后冷卻至60℃左右加入溴化乙錠至0.5µg/mL或Goldview5µL/100mL制備膠塊,取10µLPCR擴增產(chǎn)物與2.0µL6×加樣緩沖液混合,點樣,其中一孔加入DNA分子量標準。0.5×TBE電泳緩沖液,10V/cm恒壓電泳,根據(jù)溴酚藍的移動位置確定電泳時間,用紫外檢測儀或凝膠成像系統(tǒng)觀察和記錄結果。
PCR擴增產(chǎn)物也可采用毛細管電泳儀進行檢測。
f)結果判定,陰性對照和空白對照均未出現(xiàn)條帶,陽性對照出現(xiàn)預期大小的擴增條帶(表1),判定本次PCR檢測成立;待測樣品出現(xiàn)預期大小的擴增條帶,判定為PCR結果陽性,根據(jù)表1判定肉毒梭菌菌株型別,待測樣品未出現(xiàn)預期大小的擴增條帶,判定PCR結果為陰性。
5.3.3.3 菌株產(chǎn)毒試驗
將PCR陽性菌株或可疑肉毒梭菌菌株接種庖肉培養(yǎng)基或TPGYT肉湯(用于E型肉毒梭菌),按5.3.1.2條件厭氧培養(yǎng)5d,按5.2方法進行毒素檢測和(或)定型試驗,毒素確證試驗陽性者,判定為肉毒梭菌,根據(jù)定型試驗結果判定肉毒梭菌型別。
注:根據(jù)PCR陽性菌株型別,可直接用相應型別的肉毒毒素診斷血清進行確證試驗。
6 結果報告
6.1 肉毒毒素檢測結果報告
根據(jù)5.2.3確證試驗結果,報告25g(mL)樣品中檢出或未檢出肉毒毒素。
根據(jù)5.2.5定型試驗結果,報告25g(mL)樣品中檢出某型肉毒毒素。
6.2 肉毒梭菌檢驗結果報告
根據(jù)5.3.3.2 PCR檢測結果陰性,報告樣品中未檢出肉毒梭菌。
根據(jù)5.3.3.3菌株產(chǎn)毒試驗結果,報告樣品中檢出肉毒梭菌或某型肉毒梭菌或未檢出肉毒梭菌。
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