L-*在細胞培養中重要嗎？它在溶液中不穩定嗎？
L-*在細胞培養時是重要的。脫掉氨基后，L-*可作為培養細胞的能量來源、參與蛋白質的合成和核酸代謝。L-*在溶液中經過一段時間后會降解，但是確切的降解率一直沒有zui終定論。L-*的降解導致氨的形成，而氨對于一些細胞具有毒性。
哪種培養基中可以省去加酚紅？
酚紅在培養基中用作PH值的指示劑：中性時為紅色，酸性時為黃色，堿性時為紫色。研究表明，酚紅可以模擬固醇類激素的作用，（特別是雌激素）。為避免固醇類反應，培養細胞，尤其是哺乳類細胞時，用不加酚紅的培養基。由于酚紅干擾檢測，一些研究人員在做流式細胞檢測時，不使用加有酚紅的培養基。
二價離子抑制*活性嗎？使用*時加入EDTA的目的是什么？
二價離子的確抑制*活性。EDTA用來螯合游離的鎂離子和鈣離子，以便保持抑制*的活性。建議*處理細胞前，用EDTA清洗細胞，以消除來自培養基中所有的二價離子。
培養基中丙酮酸鈉的作用是什么？
丙酮酸鈉可以作為細胞培養中的替代碳源，盡管細胞更傾向于以葡萄糖作為碳源，但是，如果沒有葡萄糖的話，細胞也可以代謝丙酮酸鈉。
室溫下配制的Tris-HCl溶液，在37℃使用時PH值是多少？
緩沖液PH值隨溫度變化而變化。下表列出了50mM Tris-HC 溶液在4℃，25℃，37℃時，不同PH值。 50mM Tris-HC 溶液在4℃，25℃，37℃時，不同PH值 4°C 25°C 37°C 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 8.8 8.9 9.0 9.1 9.2 9.3 9.4 8.5 7.6 7.7 7.8 7.9 8.0 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 8.8 7.2 7.3 7.4 7.5 7.6 7.7 7.8 7.9 8.0 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5
在Sf9, Sf21, 和high Five細胞懸浮培養時，肝素的使用量是多少？
為了防止懸浮培養細胞聚集的形成，使用肝素濃度為10單位/毫升細胞懸液。
在重新凍存sf9細胞前，它可以傳多少代？
隨著傳代的次數的增加，它的感染能力會降低嗎？ 通常情況當細胞經過30次傳代后，應該返回凍存。無論什么時候計數時，都應該檢查細胞活力。如果超過95％的細胞保持有活力和在大約30小時左右加倍，細胞仍然可以使用。如果活力和加倍時間下降，它們的感染力將不在是有效的。
貯存在冰箱中的瓶口已開的培養基，在放置幾天后顏色變紫?
這主要是由于在暴露到周圍的CO2水平時，碳酸氫納導致了pH值的上升。您可以在使用前松開瓶口，在CO2培養箱孵育培養基10-15分鐘，來校正溶液的pH值（確定松開瓶口以保證氣體交換）
為什么要在溶解的一周內使用貯存在4℃冰箱中的液體*溶液?
*在4℃就可能開始降解，如果在室溫下放置超過30分鐘，就會變得不穩定。 保存血清的方法? 我們建議血清應保存在-5℃至-2O℃。若存放于4℃時，請勿超過一個月。若一次無法用完一瓶，建議無菌分裝血清至恰當的滅菌容器內，再放回冷凍。
血清解凍后發現有絮狀沉淀物出現，該如何處理?
血清中沉淀物的出現有許多種原因，但zui普遍的原因是由于血清中脂蛋白的變性所造成，而血纖維蛋白（形成凝血的蛋白之一）在血清解凍后，也會存在于血清中，亦是造成沉淀物的原因之一。但這些絮狀沉淀物，并不影響血清本身的質量。 若欲去除這些絮狀沉淀物，可以將血清分裝至無菌離心管內，以400g稍微離心,上清液即可接著加入培養基內一起過濾。不使用過濾的方法去除這些絮狀沉淀物，因為它可能會阻塞過濾膜。 為什么要熱滅活血清? 加熱可以滅活補體系統。激活的補體參與溶解細胞事件，刺激平滑肌收縮，細胞和血小板釋放組胺，激活淋巴細胞和巨噬細胞。在免疫學研究，培養ES細胞、平滑肌細胞時，推薦使用熱滅活血清。
為什么儲存在冰箱中的胎牛血清會出現沉淀?
有些胎牛血清產品沒有預老化，儲存在2－8℃時，血清中的各種蛋白和脂蛋白（如冷凝集素、纖維蛋白原、玻粘連蛋白等）可能聚集而形成沉淀或可見的混濁。這應該不會影響血清的質量。推薦在－20℃儲存胎牛血清，避免反復凍融。
怎樣避免沉淀物的產生?
我們建議您在使用血清的時候，注意下列的操作: （1）解凍血清時，請按照所建議的逐步解凍法（-20℃至4℃至室溫），若血清解凍時改變的溫度太大（如-20℃至37℃），非常容易產生沉淀物。 （2）解凍血清時，請隨時將之搖晃均勻，使溫度及成分均一，減少沉淀的發生。 （3）請勿將血清置于37℃太久。若在37℃放置太久，血清會變得混濁，同時血清中許多較不穩定的成分也會因此受到損害，而影響血清的質量。 （4）血清的熱滅活非常容易造成沉淀物的增多，若非必要，可以無須做此步驟。 （5）若必須做血清的熱滅活，請遵守56℃，30分鐘的原則，并且隨時搖晃均勻。溫度過高，時間過久或搖晃不均勻，都會造成沉淀物的增多。
