ELISA檢測中陰性本底形成的原因及處理方法
ELISA試驗中，經常會碰到陰性本底的問題。主要是本底過高和不同標本的本底值差異較大，本底在ELISA中的非特異性顯色。底物未經過酶作用而呈現的顏色稱為空白。底物液如配置不當會出現一定的空白值。這個值只要不太高（A<0.05),可以從各測定值減除，并不影響實驗結果。這里討論的是不含代測抗原或抗體的陰性標本在ELISA中出現本底。
固相載體的吸附：
在酶免疫測定中，ELISA中的特點是利用固相載體作為分離游離和結合的酶結合物的手段。固相載體與吸附在其上的抗原或抗體形成固相抗原或固相抗體，即免疫吸附劑。通常所用的固相載體聚苯乙烯其表面主要是疏水基團，通過疏水鍵與蛋白質結合。這種吸附石物理性的非特異性吸附，雖然蛋白質的分子量，等電點,濃度等對吸附的量有一定的影響，蛋總的來說各種蛋白質均能吸附在聚苯乙烯載體的表面。因此除在包被時有目的地使抗原或抗體吸附在載體上外，在ELISA各個步驟中均有可能發生干擾物質的吸附，使zui終產生與受檢抗原-抗體反應無關的顯色，這是形成本底的主要原因。
陽性的顯色和陰性的本底
夾心法試驗中，陽性標本中含有檢測系統中特異性的抗原或抗體，作為橋梁聯結免疫吸附劑和酶結合物，使酶結合物吸附在固相上，無色底物在酶的作用下轉變成有色產物，這就是陽性的顯色，顯色的深度與陽性標本中代測抗體或抗原的量成正比。陰性標本中不含代測的抗原或抗體，酶結合物不能聯結在固相上，固不顯色。酶結合物在固相上的非特異吸附通常有以下幾條途徑1·酶結合物與固相上包被蛋白質成分起反應。包被抗原不純時，雜質蛋白也會吸附在固相載體上，某些雜質可與酶標抗體因 錯認 而結合。2·酶結合物直接吸附在固相載體上。酶結合物是蛋白質，可以直接吸附在固相載體表面，試驗中選擇了不利于這種媳婦的條件，一般只要酶結合物工作濃度適當，反應一段時間后，經過*洗滌，可以避免這種吸附。3·在ELISA中引入*-親和素系統，可以提高檢測的靈敏度，但如果使用不當，可使本地加深，反而得不償失。*表及蛋白質如比例不合適，極易形成較高的陰性本底。4·雙抗體夾心法中標本中含有類風濕因子，也可能使陰性血清顯色。類風濕因子是作用于多種動物IgG Fe段的自身抗體，多位IgM類，之一種多價抗體。在夾心法檢測中充當抗原成分，同時與固相抗體及酶標抗體反應，是酶標抗體結合到載體上。
降低陰性本底主要有以下幾個方面:
1·固相載體：在ELISA試驗中有時碰到空白孔吸光值過高或高或赴孔實驗結果差異很大，其原因可能與酶標板質量有關
2·包被抗原：包被抗原應先經純化。從人血或組織中提取的抗原成分如HB-sAg，要*除去Ig雜質是很困難，用基本因工程從組抗原可以避免這種干擾。
3·酶標抗體：應采用價的酶標抗體，工作濃度高，稀釋度大就可以減少吸附。
4·緩沖液：配制試劑的蒸餾水的質量十分重要，以新鮮重蒸
其他常見問題：
一、ELISA試驗中結果顯色淡、靈敏度品低的原因。
1、移液的樣品吸量不足，移液時抽吸、排放太快，移液嘴內壁掛液太多貨內壁不清潔，造成加樣量不準。
2、恒溫箱溫度不是37℃（或43℃），或多塊反應板重疊放置造成板孔內的實際溫度偏差，使抗原、抗體復合物形成過少。
3、保溫時間不足，抗原、抗體反應不*
4、顯色劑加入量不足。
5、顯色液的A、B液比例不對。、
6、洗滌時沖擊力過大，洗滌液浸泡時間太長，洗滌次數增加，導致已形成的抗原、抗體復合物洗脫。
7、底物反應的溫度不夠，時間不足。
8、試劑盒在運輸、保存期間放置的溫度太高、時間過長，造成抗原、抗體效價下降，酶的活力降低。
9、試劑盒已超出保存有效期，抗原、抗體效價下降，酶活力降低。
二、ELISA試驗中結果出現白板、陽性對照不顯色的原因
1、洗滌液配制有誤。
2、終止液誤作為濃縮洗滌液或酶結合物稀釋液使用。
3、漏加酶結合物，物價酶結合物或在酶標二抗的試驗中實驗順序錯誤。
4、終止液當做底物緩沖液使用
5、配制溶液中殘留了解滅火酶活力的物質。
6、底物中未加OPD或TMB。
7、運輸、貯存不當，導致沒活力喪失。
8、底物液中未加過氧化氫或放置過久過氧化氫失效。
三、而莉薩是嚴重結果全部顯色的原因
1、酶結合物的濃度過大
2、恒溫箱溫度較高，酶結合物光片時間或底物顯色時間過長。
3、洗滌不充分，樣品中有其他成分殘留或酶結合物殘留。
4、底物配置時間過久，底物受光照射時間較長或被污染。
5、整批樣品放置時間過長被污染或生長細菌。
6、一夜醉從復使用時，未清洗干凈或消毒不*
7、配制溶液的水質有問題。
四、ELISA試驗中結果陰、樣對照顯色差距較小的原因
1、稀釋不準。加樣量不準。
2、加樣時個*被污染
3、底物不新鮮，配制時間較長或被污染。
4、試劑效價下降或超過了試劑的有效使用期。
5、配制溶液的水質有問題
五、ELISA試驗中結果重復性不好的原因
1、樣品加入量多少不一，加樣時間又長又短。
2、樣品加入后為充分混合均勻。
3、移液加樣器加樣量不一致。
4、酶標儀濾光片不對。
5、操作過程中個別反應孔中液體外濺。
6、不同批號試劑混用。
7、瓶蓋交叉使用
8、溫育條件和保溫時間不一致。
9、洗滌條件不一致。
10、顯色條件和時間不一致。
11、邊緣效應，導致周邊孔（尤為4個較）較*孔顯色為深。
12、將酶結合物或底物溶液加載了孔壁上，并有殘留。
13、酶結合物充分混勻就加入反應孔中。
14、多加或少加了酶結合物、底物。
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