微量快速平板法抗補體試驗
實驗試劑
抗凝保存液中保存的綿羊紅細胞、馬抗綿羊紅細胞抗血清（溶血素）、pH值7.4*緩沖液、聚合IgG、0.04%氨溶液。
實驗設備
12×8孔的U型微量板、稀釋器（50μl）、分液器、離心機（MSE 6 L，可使U型微量板離心）、72型分光光度計等。
實驗步驟
1. 致敏綿羊紅細胞的制備
1） 將5ml抗凝保存液中的紅細胞2 500 r/min離心5min；
2） 棄去上清液，沉淀細胞用pH值7.4*緩沖液應用液洗滌3次，每次3 500 r/min離心5min；
3） 吸取0.9ml洗滌過的壓積紅細胞加入上述緩沖液配成6%紅細胞懸液；
4） 為了使紅細胞標準化，取0.2ml稀釋的紅細胞懸液加入4.8ml 0.04%氨溶液，在72型分光光度計（波長541nm，比色杯為1cm），以蒸餾水作空白，讀數；
5） 根據以下公式調整6%紅細胞懸液的體積（V）：
V體積（ml）=15×光密度0.49
V-15=還需加入6%紅細胞懸液中的緩沖液毫升數。
6） 于上述1.5ml 6%紅細胞懸液中加入1.5ml 1∶150稀釋的溶血素，充分混勻后，37℃水浴15～20min，此種3%致敏綿羊紅細胞，可于4℃保存過夜，使用前，再經37℃水浴保溫。
2. 豚鼠補體的滴定
1） 于冷凍干燥的豚鼠補體中，加蒸餾水至原來體積，室溫放置5min，輕輕混勻，避免產生氣泡；
2） 將上述豚鼠補體用pH值7.4*緩沖液應用液作1∶10稀釋，輕輕混和，避免產生氣泡；
3） 將1∶10豚鼠補體作進一步稀釋，充分混勻，避免產生氣泡；
4） 用分液器從每個補體稀釋度中取50μl移至U型微量板的一行相應孔中（每行8孔），第8孔加入50μl、pH值7.4*緩沖液應用液作對照。具體操作時先加入緩沖液對照，然后從zui高稀釋度開始按順序加入不同稀釋度的補體；
5） 在U型微量板各孔中加入100μl、pH值7.4*緩沖液應用液及50μl致敏綿羊紅細胞；
6） 在微量板上放置一塊玻璃板，周圍用膠布密封，以避免液體蒸發，37℃溫箱內放置1h，每20min混勻一次；
7） 于室溫再放置3～4h，使紅細胞自然沉降，或用MSE 6 L離心機2000 r/min離心5min；
8） 觀察結果，對照孔應不溶血，在一般情況下，1∶40補體稀釋孔應*溶血。以恰好能使致敏紅細胞*溶血的zui高補體稀釋度作為補體滴度，稱為zui小溶血量（MHD），補體滴度通常為1∶60～1∶80，偶而可達1∶130。
3. 抗補體活性測定
1） 在U型微量板上按序號，每份被檢標本一行（12孔），另一行作為對照，分別加入50μl pH值7.4*緩沖液應用液；
2） 第1孔加入50μl被檢標本，用稀釋器將標本依次作倍比稀釋，從1∶2～1∶4.096。從zui后1孔中棄去50μl。另將聚合IgG 50μl加于對照行的*孔中，同法作倍比稀釋；
3） 每孔中加50μl pH值7.4*緩沖液應用液；
4） 每孔中再加入2MHD豚鼠補體（如1MHD=1∶80，2MHD=1∶40）；
5） 在微量板上放一塊玻璃板，周圍用膠布密封，4℃放置16～18h；
6） 加入50μl致敏綿羊紅細胞，再用膠布密封；
7） 37℃保溫1h，每20min混勻一次；
8） 室溫再放置2～5h或用MSE 6 L離心機2000 r/min離心5min；
9） 根據孔底沉降紅細胞狀況，按以下五級標準記錄結果：
0級：*溶血，無紅細胞；
1級：大約溶解75%紅細胞；
2級：大約溶解50%紅細胞；
3級：大約溶解25%紅細胞；
4級：無溶血。
